Connaissance Enseignement du bioprocessus et de la biotechnologie Comment la compréhension de la croissance diauxique cellulaire et de la régulation métabolique influence-t-elle les stratégies d'exploitation dans les fermentations en usine pilote utilisant des mélanges de sucres comme substrat ?
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Équipe technique · LABPARK

Mis à jour il y a 2 mois

Comment la compréhension de la croissance diauxique cellulaire et de la régulation métabolique influence-t-elle les stratégies d'exploitation dans les fermentations en usine pilote utilisant des mélanges de sucres comme substrat ?


La compréhension de la croissance diauxique cellulaire affecte directement la manière dont les fermentations en usine pilote doivent être alimentées, surveillées et contrôlées. Lorsque les cellules consomment du glucose avant le lactose ou un autre sucre secondaire, le glucose peut réprimer les voies métaboliques alternatives et créer un temps de latence après l'épuisement du glucose. Reconnaître ce comportement aide les opérateurs à distinguer un changement de régulation normal d'une défaillance de l'équipement ou de la culture, à ajuster les décisions d'alimentation en mode « fed-batch » et à améliorer la cohérence de la biomasse ou du produit.

Le principe opérationnel central consiste à traiter les sucres mixtes comme une séquence régulée, et non comme un réservoir de carbone uniformément disponible. La surveillance de la disponibilité du substrat et de la réponse métabolique permet aux opérateurs de contrôler la transition entre les sources de carbone et de réduire les pertes de productivité évitables.

Pourquoi les sucres mixtes produisent-ils une croissance séquentielle ?

Les sources de carbone préférées dominent la croissance initiale

Chez de nombreux organismes, le glucose est consommé préférentiellement car il permet une génération rapide d'énergie et la formation de biomasse. Tant que le glucose est disponible, la cellule n'a guère d'incitation à produire les enzymes nécessaires pour métaboliser des substrats alternatifs.

Cela crée une phase de croissance initiale au cours de laquelle la culture peut sembler très productive, même si les voies pour le lactose ou d'autres sucres restent inactives.

La répression catabolique limite les voies alternatives

Le glucose peut réduire les niveaux intracellulaires d'AMPc, empêchant la formation du complexe régulateur AMPc-CAP nécessaire pour activer des gènes tels que ceux de l'opéron lactose. En conséquence, les enzymes, y compris la β-galactosidase, ne sont pas synthétisées à des niveaux suffisants pendant la phase de consommation du glucose.

Il s'agit d'une décision d'allocation régulatrice : la cellule évite de dépenser de l'énergie à produire une machinerie métabolique qui n'est pas immédiatement nécessaire.

L'exclusion de l'inducteur renforce la séquence

Le glucose peut également provoquer une exclusion de l'inducteur, limitant l'absorption ou l'induction efficace par un sucre alternatif. Même si le lactose est présent dans le bouillon de fermentation, les cellules peuvent être incapables de l'utiliser efficacement tant que les concentrations de glucose ne chutent pas suffisamment.

La concentration totale de sucre mesurée ne représente donc pas nécessairement le carbone immédiatement disponible pour la croissance.

À quoi ressemble la transition diauxique dans une usine pilote ?

La première phase de croissance est généralement rapide

Pendant la consommation du glucose, la culture peut présenter un taux de croissance élevé, une demande en oxygène accrue et une absorption prévisible du substrat. C'est souvent la phase la plus favorable à une accumulation rapide de biomasse.

Les opérateurs doivent toutefois éviter de supposer que ce comportement se poursuivra après l'épuisement du glucose. La stratégie de contrôle doit prendre en compte le prochain état métabolique.

L'épuisement du glucose peut créer une latence temporaire

Lorsque le glucose est épuisé, la croissance peut ralentir ou s'arrêter temporairement pendant que les cellules synthétisent les enzymes et les systèmes de transport pour le substrat secondaire. Cette transition est la caractéristique déterminante de la croissance diauxique.

À l'échelle pilote, ce temps de latence peut être confondu avec une limitation en oxygène, une carence en nutriments, une inhibition, une contamination ou un problème de capteur, à moins d'être interprété parallèlement aux données sur le substrat et le processus.

La deuxième phase de croissance a une cinétique différente

Une fois que les voies des sucres alternatifs sont actives, la croissance reprend sur le lactose ou une autre source de carbone secondaire. Le taux peut différer de celui de la phase glucose car la capacité de transport, l'expression enzymatique, l'affinité pour le substrat et la formation de sous-produits ont changé.

Les modèles d'exploitation à l'échelle pilote devraient donc permettre plusieurs régimes cinétiques, plutôt que d'appliquer un seul taux de croissance à l'ensemble du lot.

Comment la surveillance favorise de meilleures décisions

L'oxygène dissous peut révéler les transitions de substrat

Lorsque le glucose est épuisé, l'absorption d'oxygène peut chuter car le taux de croissance et la demande respiratoire diminuent temporairement. Cela peut produire un pic d'oxygène dissous même si l'aération et l'agitation n'ont pas changé.

Une augmentation ultérieure de la demande en oxygène peut indiquer que le métabolisme du sucre secondaire a commencé.

Les variations de pH fournissent des preuves complémentaires

Les changements dans la production d'acide, l'évolution du dioxyde de carbone et le métabolisme du substrat peuvent altérer le comportement du pH. Un changement de pH proche du point d'épuisement du glucose peut confirmer que la culture est en train de passer d'un programme métabolique à un autre.

Le pH seul n'est pas définitif ; il doit donc être évalué avec l'oxygène dissous, la biomasse, le taux d'alimentation et les mesures directes du substrat lorsqu'elles sont disponibles.

Les tendances de la biomasse identifient la phase de croissance

Les mesures de biomasse en ligne ou hors ligne aident à distinguer la croissance exponentielle, la transition diauxique, la phase stationnaire et la phase de mort. Un bref plateau pendant le changement de source de carbone est cohérent avec la régulation diauxique, tandis qu'une perte prolongée de biomasse peut indiquer un problème de processus distinct.

Cette interprétation basée sur les phases est essentielle pour décider s'il faut continuer à alimenter, ajuster l'environnement ou récolter.

Les mesures directes de sucre améliorent le contrôle

Les mesures du glucose et du lactose résiduels fournissent la preuve la plus claire de l'ordre et de l'épuisement des substrats. Elles peuvent être utilisées pour valider des capteurs logiciels basés sur l'oxygène dissous, le dioxyde de carbone, le pH et la biomasse.

Sans mesures directes ou indirectes bien validées, les opérateurs risquent d'alimenter en se basant sur la concentration totale en sucre alors que les cellules ne sont physiologiquement capables d'utiliser qu'un seul composant.

Comment les stratégies d'exploitation doivent changer

Concevoir l'alimentation en fonction de l'état régulateur

Dans le fonctionnement en mode « fed-batch », la composition et le moment de l'alimentation doivent refléter les voies qui sont actives. Une alimentation riche en glucose peut maintenir une croissance rapide mais peut continuer à réprimer l'utilisation du lactose et prolonger la transition ultérieure.

Une réduction contrôlée de la disponibilité du glucose peut encourager une activation plus précoce des voies alternatives, à condition que le taux de croissance résultant et les objectifs de produit restent acceptables.

Éviter l'alimentation excessive en substrat préféré

Une suralimentation en glucose peut causer plusieurs problèmes :

  • Répression prolongée des voies du substrat secondaire.
  • Accumulation d'acides organiques inhibiteurs ou d'autres sous-produits.
  • Demande excessive en oxygène et risque accru de limitation en oxygène.
  • Transition retardée ou mal synchronisée vers la deuxième source de carbone.

L'alimentation correcte en glucose est donc déterminée par l'état physiologique souhaité, et non simplement par le taux d'alimentation maximal possible.

Utiliser une alimentation étagée ou mélangée si nécessaire

Une stratégie étagée peut permettre une formation initiale de biomasse sur le glucose, suivie d'une transition délibérée vers le lactose ou un autre substrat. Une alimentation mélangée peut réduire la brutalité du changement, mais elle n'éliminera pas nécessairement la répression si le glucose reste au-dessus du seuil réglementaire.

La conception appropriée dépend de la priorité donnée au processus : accumulation rapide de biomasse, formation stable de produit ou utilisation continue de tous les sucres disponibles.

Maintenir les conditions requises pour la transition

La phase de croissance secondaire nécessite plus que la simple disponibilité du substrat. Un transfert d'oxygène adéquat, un contrôle du pH, la température, le mélange et les oligo-éléments doivent être maintenus pendant que les cellules expriment leur nouvelle machinerie métabolique.

Une transition réussie peut donc nécessiter des changements coordonnés dans l'alimentation et le fonctionnement de l'équipement, en particulier à mesure que l'échelle augmente et que les limitations de mélange ou de transfert d'oxygène deviennent plus significatives.

Relier l'état métabolique aux objectifs de produit

La production de biomasse nécessite de protéger la croissance exponentielle

Si la biomasse est le produit principal, la stratégie d'exploitation doit maximiser la croissance productive tout en évitant une accumulation excessive de substrat et des délais diauxiques inutiles. Le glucose peut être utilisé pour soutenir une croissance rapide au début, la transition étant gérée de manière à ce que le sucre secondaire contribue plutôt que de devenir une source de temps d'arrêt évitable.

Le moment de la récolte doit être basé sur la productivité de la biomasse et la santé de la culture, et non uniquement sur le temps écoulé.

Les métabolites secondaires peuvent nécessiter une stratégie différente

Certains produits, y compris les métabolites secondaires tels que les antibiotiques, sont produits principalement après que la croissance nette ralentit ou s'arrête. Dans ces processus, prolonger la croissance exponentielle n'est pas automatiquement bénéfique.

L'opérateur doit identifier si le produit souhaité est associé à la phase de croissance, à la phase stationnaire ou à une transition entre les deux, puis définir les stratégies d'alimentation et de récolte en conséquence.

La formation de produit peut changer lors du changement de carbone

Le changement de source de carbone peut modifier le flux à travers le métabolisme central, la formation de sous-produits, l'équilibre redox et la disponibilité des précurseurs. Même lorsque la biomasse continue d'augmenter, le taux de formation spécifique du produit peut changer pendant ou après la transition diauxique.

Les essais pilotes doivent donc suivre la concentration et la productivité du produit parallèlement à la biomasse et aux sucres résiduels.

Comprendre les compromis

Éliminer la latence n'est pas toujours l'objectif visé

Réduire une latence diauxique peut améliorer la productivité volumétrique, mais forcer l'utilisation précoce d'un sucre alternatif peut réduire le taux de croissance maximal ou compliquer le contrôle. La meilleure stratégie dépend de si le temps perdu coûte plus cher que la flexibilité métabolique gagnée.

Le comportement diauxique est une réponse biologique, pas automatiquement une erreur d'exploitation.

La composition des sucres mixtes peut varier

Les hydrolysats de biomasse contiennent souvent des proportions variables de glucose, de lactose et d'autres composés. Les changements de composition peuvent décaler le moment de la répression, de l'épuisement, de l'induction enzymatique et de la formation de sous-produits entre les lots.

Les hypothèses d'anticipation doivent donc être validées par des mesures en temps réel ou à la ligne.

Le passage à l'échelle peut exacerber les problèmes de transition

À l'échelle pilote, un mélange imparfait et des limitations de transfert d'oxygène peuvent amener la culture à subir des concentrations locales de substrat différentes de la moyenne du réacteur. Une transition qui semble bien contrôlée dans un réacteur de laboratoire peut devenir inégale ou prolongée dans un récipient plus grand.

L'agitation, l'aération, la contre-pression, l'emplacement de l'alimentation et le temps de mélange doivent être pris en compte lors de l'interprétation des signaux métaboliques.

Les signaux des capteurs ne sont pas des diagnostics uniques

Un pic d'oxygène dissous ou un changement de pH peut indiquer un épuisement du carbone, mais des signaux similaires peuvent provenir de changements dans le transfert d'oxygène, de problèmes de sonde, de variations de température ou d'interruptions de l'alimentation. Les opérateurs doivent éviter de modifier le processus sur la base d'un seul signal.

Les décisions les plus solides combinent plusieurs indicateurs avec un historique connu du bilan carbone et de l'alimentation.

Faire le bon choix pour votre objectif

Sélectionnez la stratégie d'exploitation en fonction de l'état de culture et du résultat souhaité :

  • Si votre objectif principal est l'accumulation rapide de biomasse : Contrôlez l'alimentation en glucose près de la capacité d'absorption prévue, évitez la suralimentation inhibitrice et gérez le passage au sucre secondaire avant que la latence résultante ne compromette la productivité.
  • Si votre objectif principal est l'utilisation complète des sucres mixtes : Mesurez les sucres résiduels directement si possible, concevez une alimentation étagée ou mélangée, et vérifiez que le glucose a suffisamment chuté pour permettre l'activation des voies alternatives.
  • Si votre objectif principal est la production de métabolites secondaires : Identifiez les phases de croissance et stationnaires associées à la formation du produit, puis évitez les stratégies d'alimentation qui prolongent la croissance de la biomasse sans améliorer la productivité spécifique.
  • Si votre objectif principal est la robustesse du processus à l'échelle pilote : Corrélez l'oxygène dissous, le pH, la biomasse, le dioxyde de carbone, l'historique d'alimentation et les sucres résiduels afin que les transitions diauxiques puissent être distinguées des problèmes de transfert d'oxygène, de mélange ou d'instrumentation.

Comprendre la croissance diauxique transforme la fermentation de sucres mixtes d'un simple problème d'alimentation en une séquence contrôlable d'états physiologiques.

Tableau récapitulatif :

Priorité du processus Risque clé Stratégie d'exploitation recommandée Indicateurs critiques
Croissance rapide de la biomasse Suralimentation en glucose, limitation en oxygène et accumulation de sous-produits Alimenter en glucose près de la capacité d'absorption et gérer la transition vers le sucre secondaire Biomasse, glucose, oxygène dissous, pH, dioxyde de carbone
Utilisation complète des sucres mixtes La répression par le glucose retarde la consommation du sucre secondaire Utiliser une alimentation étagée ou mélangée et vérifier directement les sucres résiduels Glucose, lactose ou sucre secondaire, biomasse, absorption d'oxygène
Production de métabolites secondaires Prolonger la croissance peut réduire la productivité spécifique Aligner l'alimentation et la récolte sur la phase de croissance ou stationnaire du produit Concentration du produit, productivité, biomasse, sucres résiduels
Robustesse à l'échelle pilote Les problèmes de mélange, de transfert d'oxygène ou de capteurs peuvent imiter une transition diauxique Corréler plusieurs signaux de processus avec l'historique d'alimentation et le bilan carbone Oxygène dissous, pH, biomasse, dioxyde de carbone, taux d'alimentation
Contrôle du passage à l'échelle Les gradients locaux de substrat prolongent ou déstabilisent la transition Évaluer l'agitation, l'aération, la contre-pression, l'emplacement de l'alimentation et le temps de mélange Performance de mélange, capacité de transfert d'oxygène, profils de substrat

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